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什么是實(shí)時(shí)定量 PCR?

更新時(shí)間:2023-09-15      點(diǎn)擊次數:1424

實(shí)時(shí)定量 PCR 是一種使用熒光化學(xué)物質(zhì)測量 DNA 擴增反應中每個(gè)聚合酶鏈式反應 (PCR) 循環(huán)后產(chǎn)物總量的方法。通過(guò)內參或外參方法對待測樣品中特定DNA序列進(jìn)行定量分析的方法。

實(shí)時(shí)PCR是在PCR擴增過(guò)程中通過(guò)熒光信號實(shí)時(shí)檢測PCR過(guò)程。由于在PCR擴增的指數期內,模板的Ct值與模板的初始拷貝數之間存在線(xiàn)性關(guān)系,因此成為定量的依據。

PCR技術(shù)原理

所謂實(shí)時(shí)定量PCR技術(shù)是指在PCR反應體系中添加熒光基團,利用熒光信號的積累實(shí)時(shí)監測整個(gè)PCR過(guò)程,最后通過(guò)標準品對未知模板進(jìn)行定量分析的方法。曲線(xiàn)。

檢測方法

1. SYBR Green I 方法:

PCR反應體系中加入過(guò)量的SYBR熒光染料。 SYBR熒光染料特異性摻入DNA雙鏈后,發(fā)出熒光信號,而未摻入鏈中的SYBR染料分子不會(huì )發(fā)出任何熒光信號,從而保證了熒光信號的增加全同步隨著(zhù)PCR產(chǎn)物的增加。

2.TaqMan探針?lè )ǎ?/span>

當探針完整時(shí),報告基團發(fā)出的熒光信號被猝滅基團吸收;在 PCR 擴增過(guò)程中,Taq 酶的 5'-3' 核酸外切酶活性裂解并降解探針,形成報告熒光團和猝滅基團。將熒光基團分開(kāi),使熒光監測系統能夠接收到熒光信號,即每擴增一條DNA鏈,就形成一個(gè)熒光分子,熒光信號的積累與DNA鏈的形成全同步。 PCR 產(chǎn)物。

技術(shù)原理

熒光素標記的Taqman探針與模板DNA混合后,完成高溫變性、低溫復性、適宜溫度延伸的熱循環(huán),根據模板DNA互補的Taqman探針被切斷聚合酶鏈反應定律。熒光素在反應體系中呈游離態(tài),在特定光激發(fā)下發(fā)出熒光。隨著(zhù)循環(huán)次數的增加,擴增的目的基因片段呈指數增長(cháng)。通過(guò)實(shí)時(shí)檢測隨擴增變化而變化的相應熒光信號強度,獲得Ct值,同時(shí)以已知模板濃度的幾種標準品作為對照,計算樣品中目的基因的拷貝數可以得到待測試的。

CT值

Ct值(Cycle Threshold,循環(huán)閾值)的含義是:每個(gè)反應管內熒光信號達到設定閾值時(shí)所經(jīng)歷的循環(huán)次數

1. 熒光閾值(threshold)設置

PCR反應的前15個(gè)循環(huán)的熒光信號作為熒光背景信號,熒光閾值默認(default)設置為第3-15個(gè)循環(huán)的熒光信號標準差的10倍,即:閾值 = 10*SDcycle 3- 15

2. Ct值與起始模板的關(guān)系

每個(gè)模板的Ct值與模板初始拷貝數的對數呈線(xiàn)性關(guān)系,公式如下。
Ct=-1/lg(1+Ex)*lgX0+lgN/lg(1+Ex) 初始拷貝數越高,Ct 值越低。使用已知初始拷貝數的標準品可以制作標準曲線(xiàn),其中橫坐標表示初始拷貝數的對數,縱坐標表示Ct值。因此,只要獲得未知樣品的Ct值,就可以從標準曲線(xiàn)計算出該樣品的起始拷貝數。
n為擴增反應的循環(huán)數,X0為初始模板量,Ex為擴增效率,N為當熒光擴增信號達到閾值強度時(shí)擴增產(chǎn)物的量。

熒光化學(xué)品

實(shí)時(shí)定量PCR中使用的熒光物質(zhì)可分為熒光探針和熒光染料兩類(lèi)。原理簡(jiǎn)述如下:
1. TaqMan熒光探針:在PCR擴增過(guò)程中,隨一對引物一起添加特異性熒光探針。探針是寡核苷酸,兩端都標記有報告熒光基團和猝滅劑。熒光團。當探針完整時(shí),報告基團發(fā)出的熒光信號被猝滅基團吸收;在 PCR 擴增過(guò)程中,Taq 酶的 5'-3' 核酸外切酶活性裂解并降解探針,形成報告熒光團和猝滅基團。熒光基團分離,使熒光監測系統能夠接收到熒光信號,即每擴增一條DNA鏈就形成一個(gè)熒光分子,熒光信號的積累與PCR的形成全同步產(chǎn)品。新型TaqMan-MGB探針使該技術(shù)能夠同時(shí)進(jìn)行定量基因分析和基因突變(SNP)分析,有望成為基因診斷和個(gè)性化醫療分析的技術(shù)平臺。

2. SYBR熒光染料:在PCR反應體系中,加入過(guò)量的SYBR熒光染料,SYBR熒光染料非特異性摻入DNA雙鏈,并發(fā)出熒光信號,而未摻入DNA雙鏈的SYBR染料分子則發(fā)出熒光信號。鏈不會(huì )發(fā)射任何熒光。信號,從而保證熒光信號的增加與PCR產(chǎn)物的增加全同步。 SYBR 僅與雙鏈 DNA 結合,因此熔解曲線(xiàn)可用于確定 PCR 反應是否具有特異性。

3、分子信標:是一種莖環(huán)雙標記寡核苷酸探針,在5、3端形成約8個(gè)堿基的發(fā)夾結構。兩端的核酸序列互補配對,導致熒光團和猝滅基團非常接近并且不發(fā)出熒光。 PCR產(chǎn)物生成后,在退火過(guò)程中,分子信標的中間部分與特定的DNA序列配對,熒光基因和猝滅基因分離,產(chǎn)生熒光[1]。

傳統定量PCR

1. 傳統定量PCR方法介紹

1)內參法:將定量的內標和引物加入到不同的PCR反應管中,通過(guò)基因工程方法合成內標。上游引物有熒光標記,下游引物沒(méi)有熒光標記。在擴增模板的同時(shí),內標也被擴增。 PCR產(chǎn)物中,由于內標和目標模板的長(cháng)度不同,可以通過(guò)電泳或高效液相分離兩者的擴增產(chǎn)物,并分別測定它們的熒光強度,內標可以用作定量待檢測模板的對照。
2)競爭法:選擇含有突變克隆產(chǎn)生的新內切酶位點(diǎn)的外源競爭模板。在同一反應管中,用同一對引物(其中一個(gè)引物帶有熒光標記)同時(shí)擴增待測樣品和競爭模板。擴增后,PCR產(chǎn)物用核酸內切酶消化,競爭模板的產(chǎn)物被消化成兩個(gè)片段,而待測模板則不被酶切??梢酝ㄟ^(guò)電泳或高效液相分離兩種產(chǎn)物,并可以單獨測量熒光強度,根據已知模板推斷未知模板的初始拷貝數。
3)PCR-ELISA法:利用di高辛或生物素等標記引物,將擴增產(chǎn)物與固相板上的特異性探針結合,然后加入抗di高辛或生物素酶標抗體-辣根過(guò)氧化反應。底物酶結合,最后酶使底物顯色。常規的PCR-ELISA方法只是定性實(shí)驗。若加入內標物制作標準曲線(xiàn),也可達到定量檢測的目的。

2. 內標在傳統定量中的作用

由于傳統的定量方法是終點(diǎn)檢測,即PCR到達平臺期后進(jìn)行檢測,而當PCR通過(guò)對數期擴增到達平臺期時(shí),檢測重現性極差。同一個(gè)模板在96孔PCR機上重復96次,得到的結果相差很大,因此無(wú)法直接從終產(chǎn)物的量計算出起始模板的量。通過(guò)添加內標可以部分消除最終產(chǎn)品定量造成的誤差。但即便如此,傳統的定量方法也只能算是半定量和粗略的定量方法。

3.內標對定量PCR的影響

如果在待測樣品中加入初始拷貝數已知的內標,則PCR反應變成雙PCR,雙PCR反應中兩個(gè)模板之間存在干擾和競爭,特別是當內標的初始拷貝數為已知的內標時(shí)。兩個(gè)模板差異比較大的時(shí)候,這種競爭就會(huì )更加顯著(zhù)。但由于待測樣品的初始拷貝數未知,因此無(wú)法添加適量的已知模板作為內標。也正是因為這個(gè)原因,傳統的定量方法雖然增加了內標,但仍然只是一種半定量方法。

實(shí)時(shí)定量PCR

實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)有效解決了傳統定量?jì)H終點(diǎn)檢測的局限性,實(shí)現每個(gè)循環(huán)檢測一次熒光信號強度,并記錄在計算機軟件中,通過(guò)計算Ct值對每個(gè)樣品,根據標準曲線(xiàn)獲得定量結果。因此,無(wú)內標實(shí)時(shí)定量PCR基于兩個(gè)基礎:
1)Ct值的重現性 當PCR循環(huán)達到Ct值所在的循環(huán)數時(shí),剛剛進(jìn)入真正的指數擴增階段(對數階段)。此時(shí),微小的誤差還沒(méi)有被放大,因此Ct值的重現性好。 ,即同一個(gè)模板在不同時(shí)間擴增或者在不同管中同時(shí)擴增,得到的Ct值是恒定的。
2)Ct值與起始模板的線(xiàn)性關(guān)系 由于Ct值與起始模板的對數之間存在線(xiàn)性關(guān)系,因此可以利用標準曲線(xiàn)來(lái)定量測定未知樣品。因此,實(shí)時(shí)熒光定量PCR是一種利用外標曲線(xiàn)的定量方法。方法。
與內標法相比,外標曲線(xiàn)定量法是一種準確、可靠的科學(xué)方法。使用外標曲線(xiàn)的實(shí)時(shí)熒光定量PCR是迄今為止最準確、重現性好的定量方法。已得到世界的認可,廣泛應用于基因表達研究、轉基因研究、藥效評估、病原檢測等領(lǐng)域。

實(shí)時(shí)熒光定量PCR的定量方法

在實(shí)時(shí)PCR中,模板定量有兩種策略:相對定量和絕對定量。

實(shí)時(shí)熒光定量PCR相關(guān)應用

臨床疾病診斷

各類(lèi)肝炎、艾滋病、流感、肺結核、性病等傳染病的診斷及療效評價(jià);地中海貧血、血友病、性別發(fā)育不良、智力低下綜合征、胎兒畸形的優(yōu)生學(xué)和產(chǎn)前檢查;腫瘤標志物和腫瘤基因檢測實(shí)現腫瘤疾病的診斷;基因檢測實(shí)現了遺傳病的診斷。

動(dòng)物疫病檢測

流感、新城疫、口蹄疫、豬瘟、沙門(mén)氏菌、大腸桿菌、胸膜肺炎放線(xiàn)桿菌、寄生蟲(chóng)病等、炭疽桿菌。

食品安全

乳制品企業(yè)中食品源性微生物、食品過(guò)敏原、轉基因生物、坂崎腸桿菌的檢測。

科學(xué)研究

與醫學(xué)、農牧業(yè)、生物學(xué)相關(guān)的分子生物學(xué)定量研究。

應用行業(yè)

各級各類(lèi)醫療機構、大專(zhuān)院校及科研院所、疾控中心、檢驗檢疫局、獸醫站、食品企業(yè)及乳品廠(chǎng)等。由于qPCR是病原基因核酸的實(shí)時(shí)定量檢測,因此
具有更多的特性。與化學(xué)發(fā)光、時(shí)間分辨率、蛋白芯片等免疫學(xué)方法相比具有優(yōu)勢。


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