細胞增殖測定廣泛應用于細胞毒性研究、癌癥研究和細胞生物學的許多其他領域。其中許多可以通過熒光標記對增殖細胞進行可視化,并且適合高通量篩選。
檢測復制的 DNA 可以說是檢測增殖的最直接方法。這是通過使用溴脫氧尿苷 (BrdU)核苷實現(xiàn)的,該核苷在復制過程中融入 DNA。然后,細胞 DNA 中的這些核苷修飾可以通過抗 BrdU 抗體檢測到。盡管具有特異性,但這種測定方法繁瑣且難以重現(xiàn),因為需要用刺激性試劑處理細胞,以使 DNA 暴露于抗體,否則這些抗體不會穿透細胞結構。
一種更溫和的替代方案是乙炔基脫氧尿苷 (EdU),可以通過將其添加到培養(yǎng)基中或注射到動物體內來將其遞送至細胞。摻入 DNA 后,該核苷可在銅 (I) 催化下與各種熒光染料疊氮化物結合,從而對復制的 DNA 進行熒光染色。該測定易于執(zhí)行、快速且可重復。它不需要對細胞進行嚴酷的處理(只需要用 Triton 進行透化),因此可以更好地保存細胞結構。在用疊氮化染料處理和最后的洗滌步驟(步驟 8)后,可以使用具有各種發(fā)射波長的熒光團(例如 Hoechst、DAPI或熒光標記抗體)來標記細胞。
5-乙炔基-2'-脫氧尿苷 (EdU)
銅 (II)-BTTAA 絡合物— сlick сhemistry 催化劑
抗壞血酸— 銅的還原劑
疊氮化物熒光染料
DMSO,標簽級— 疊氮化物溶劑
Triton X-100(或 Tween-20)
PBS,pH 7.4
100 mM Tris 緩沖液,pH 7.4
確切的方案取決于特定的細胞或組織類型,但一般工作流程如下所述:
將細胞/組織與 10–20 μM EdU 孵育所需的時間。
用含 3.7% 甲醛的 PBS 固定細胞 15 分鐘。
用 PBS 清洗細胞。
用含有 0.2% Triton X-100(或 0.5% Tween-20)的 PBS 透化細胞 30 分鐘。
再次用 PBS 清洗細胞。
在 100 mM Tris 緩沖液,pH 7.4(對于磺化疊氮化物)或 100 mM Tris 緩沖液,pH 7.4(含 50% DMSO)中制備含有 2 mM 銅 (II)-BTTAA 復合物、10 mM 抗壞血酸和 5 μM 疊氮化染料的混合物(對于非磺化疊氮化物)。該混合物應新鮮制備,因為銅 (I) 在水溶液中不穩(wěn)定。
將細胞與點擊反應混合物一起孵育 30 分鐘。
用 PBS 清洗細胞。
(可選)如果細胞必須用不同的熒光團標記,請使用標準方案繼續(xù)染色。
磺化(水溶性)疊氮化物,例如磺基氰疊氮化物和 AF 疊氮化物,可產生最佳效果。當使用非磺化疊氮化物(例如氰疊氮化物或 BDP 疊氮化物)時,確保反應混合物中 DMSO 濃度為 50%。